ICS 65.020.30 CCS B 44 长 2201 春 市 地 方 标 准 DB 2201/T 20—2022 梅花鹿胚胎移植技术规范 Technical specification for embryo transfer of sika deer 2022 - 01 - 14 发布 2022 - 01 - 30 实施 长春市市场监督管理局  发 布 DB 2201/T 20—2022 前 言 本文件按照GB/T 1.1—2020《标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。 本文件的某些内容可能涉及专利，本文件的发布机构不承担识别专利的责任。 本文件由长春市农业农村局提出并归口。 本文件起草单位：长春市农业科学院、长春市乾艺生物科技研究院、长春市颂祥牧业科技有限公司。 本文件主要起草人：田来明、崔鹤馨、权心娇、付晓霞、李男、陈琦、叶飞、吕文发、魏海军、刘 磊、张鸿、祝春玲、张事铭、吕铁峰、沈金龙。 I DB 2201/T 20—2022 梅花鹿胚胎移植技术规范 1 范围 本文件规定了胚胎移植的基本要求、前期准备、胚胎移植、妊娠检查和记录的要求。 本文件适用于梅花鹿胚胎生产和移植技术操作。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件， 仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本 文件。 DB 22/T 2611-2017 梅花鹿冷冻精液 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 胚胎移植 embryo transfer 将良种母鹿体内早期胚胎或体外受精及其他方式获得的早期胚胎，移植到同种生理状态相同的受体 母鹿体内，使之继续发育成个体的技术。 3.2 供体鹿 donor 在胚胎移植过程中提供胚胎的母鹿。 3.3 受体鹿 recipient 在胚胎移植过程中接受胚胎的母鹿。 3.4 同期发情 synchronization of estrus 利用某些激素制剂人为地控制并调整母鹿在预定时间内集中发情。 3.5 阴道栓 vaginal suppository 一种内含孕酮、用特制的放置器将其放入阴道穹隆的同期发情装置。 3.6 超数排卵 multiple ovulation 在母鹿发情周期的适当时间，应用外源促性腺激素处理，使卵巢比自然发情时有更多的卵泡发育并 排卵，简称为“超排”。 3.7 人工授精 artificial insemination 2 DB 2201/T 20—2022 用人工方法适时将精液输入发情母鹿宫颈内达到受孕，以代替公母鹿交配而繁衍后代的一种繁殖方 法。 3.8 冷冻精液 frozen semen 鲜精液经人工处理后在液氮中（-196 ℃）冷冻保存的精液。 4 基本要求 4.1 供体和受体母鹿应为同一属种。 4.2 供体鹿和受体鹿发情时间相差不应超过 24 h。 4.3 从供体鹿输卵管内收集到的胚胎应移植到受体鹿的输卵管内，从供体鹿子宫角内收集到的胚胎应 移植到受体鹿的子宫角内。 4.4 胚胎发育应处于周期黄体期内。 4.5 供体鹿和受体鹿的比例应为 1:5 ～ 1:6。 5 前期准备 5.1 5.1.1 供体鹿和受体鹿选择 供体鹿选择 5.1.1.1 品种优良，生产性能好。 5.1.1.2 遗传性能稳定，谱系完整。 5.1.1.3 体质健壮，无遗传疾病、生殖疾病和传染性疾病。 5.1.1.4 产历清楚，无流产史，性周期正常，繁殖机能好的适龄成年母鹿。 5.1.2 受体鹿选择 5.1.2.1 健康、营养状况良好，无遗传疾病、生殖疾病和传染性疾病。 5.1.2.2 鹿。 繁殖性能良好，发情周期正常，母性和哺乳能力良好，无流产史，产后 60 d 以上的经产母 5.2 5.2.1 同期发情 供体鹿 空怀母鹿在任意一天放入含有孕激素的阴道栓，12 d 后撤掉，同时肌肉注射孕马血清促性腺激 素（PMSG）300 IU ～ 350 IU。 5.2.2 受体鹿 5.2.2.1 空怀母鹿同期处理之前应进行直肠触摸或超声波检查，检查卵巢是否有周期性黄体。 5.2.2.2 操作步骤同 5.2.1。 5.2.2.3 同期发情处理后，密切观察，通过直肠触摸或超声波检查卵泡发育状态，观察发情。 3 DB 2201/T 20—2022 5.2.3 发情鉴定 阴道栓取出后 12 h 开始用试情公鹿每隔 2 h ～ 4 h 试情一次，每次持续 0.5 h ～ 1 h。母鹿 稳定接受爬跨即为发情。记录母鹿接受爬跨的时间。 5.3 供体鹿超数排卵 放置阴道栓当天记为第 0 d，放阴道栓第 9 d 开始注射促卵泡素（FSH），每天注射两次间隔 12 h， 早晚各 1 次， 4 天 8 次减量注射。到第 12 d ～13 d 结束，共注射 320 mg FSH。第 7 次注射 FSH 时取出阴道栓。 5.4 人工授精 5.4.1 冷冻精液品质 应符合 DB 22/T 2611 的规定。 5.4.2 操作步骤 5.4.2.1 精液准备：细管冻精空气浴后，应用 38 ℃ ± 2 ℃ 温水直接浸泡解冻，不超过 10 min； 5.4.2.2 确认母鹿发情接受爬跨后，进行输精； 5.4.2.3 保定母鹿，外阴应清洗消毒； 5.4.2.4 把精液装入无胶塞注射器，并连接输精管，排出空气，冻精的剂量为 2 支/头； 5.4.2.5 抹无菌润滑剂，手持输精管缓慢插入母鹿阴道内，小心通过子宫颈插入子宫体，推入精液， 将输精管缓慢退出，完成输精。 6 胚胎移植 6.1 手术冲胚 6.1.1 时间 应在供体母鹿第一次配种后 6 d ～ 7 d。 6.1.2 器材 冲胚管及内芯、钝性9 # 或12 # 针头、止血钳、注射器、培养皿、量筒、毛剪、镊子、手术刀、 手术缝合针和缝合线、创布、止血纱布、体式显微镜、恒温板等。 6.1.3 药品 新洁尔灭、0.9%生理盐水、胚胎保存液（ Holding液）、酒精、碘伏、青霉素、链霉素、石蜡油、 麻醉药、解麻药等。 6.1.4 冲胚液的配置 杜氏磷酸盐缓冲液（ PBS），配方参见附录 A 。或者使用商品冲胚液。 6.1.5 步骤 4 DB 2201/T 20—2022 6.1.5.1 供体母鹿应在术前 24 h 内禁食禁水，手术在冲胚室进行。 6.1.5.2 供体母鹿应进行全身麻醉，呈前低后高仰卧保定。 6.1.5.3 麻醉后的母鹿应进行术部备皮，用温水清洗，5% 碘酊和 75% 酒精消毒。 6.1.5.4 在腹部中线距乳房约 4 cm 处做一切口，将两侧子宫角和输卵管暴露，观察左右卵巢上的黄 体发育情况并记录。 6.1.5.5 在子宫角大弯处钝性穿孔约 2 mm，插入冲胚管，由充气管注入 5 mL 左右空气，使气囊封阻 子宫腔；输卵管近子宫端用带胶管的止血钳做封闭，在子宫角和输卵管结合部的子宫角端插入钝性 9 # 或 12 # 针头作为接胚管，将 10 mL ～ 30 mL 冲胚液（35 ℃ ～ 37 ℃）缓慢注入冲胚管，同时接收 胚胎，收集于培养皿（直径 90 mm）中，放气后取下冲胚管。 6.1.5.6 将子宫角放回体内，并用 0.9 % 的生理盐水进行冲洗，并注入 2 mL 石蜡油以防止生殖道连。 6.1.5.7 缝合伤口，撒抗生素（青霉素和链霉素），并在术后的 3 d 内每天注射 2 次青霉素（8000000 IU/次）。 6.2 胚胎 6.2.1 胚胎质量鉴定 6.2.1.1 检胚 在实验室（检胚室）内 20 ℃～25 ℃常温下，将冲胚后回收液平皿放在30℃的恒温板上，置于体 式显微镜下，划分区域，按从左到右、从上到下的“Z”路线进行检查。检出的胚胎用吸卵器及时移入 PBS 中进行鉴定，确定受精与否及胚胎发育阶段。 6.2.1.2 分级 6.2.1.1 配种后 6 d～7 d 的供体鹿，处于以下发育期：桑椹胚（M）、致密桑椹胚（CM）、早期囊胚 （EB）、囊胚（B）或扩张囊胚（EXB）。 6.2.1.2 胎。 按形态学将胚胎划分为 1、2、3、4 四个等级，1、2 级胚胎为可用胚胎，3、4 级为不可用胚 a)1 级： 发育正常，胚龄与发育期一致，胚胎细胞团成均匀对称的球形，轮廓清晰，分裂球大小 均匀，结构紧凑，色调和透明度适中，无游离的细胞和液泡，或很少，变性细胞比例少于 10%； b)2 级：胚龄与发育期基本一致，轮廓清晰，分裂球大小基本一致， 色调和透明度及细胞密度良 好，可见到一些游离的细胞和液泡， 变性细胞占 10%～30%； c)3 级：胚龄与发育期不太一致，轮廓不清晰，色调过暗或过淡，细胞密度小，结构较松散，游离 的细胞或液泡较多，变性细胞达 30%～50%； d)4 级：发育阶段迟缓、细胞不均匀、变性细胞占胚胎大部分；未受精卵。 6.2.2 冷冻保存和解冻 6.2.2.1 冷冻保存 6.2.2.1.1 器具 实体显微镜、胚胎冷冻仪、液氮罐、细管、胚胎吸管、0.22 µm过滤器、培养皿、记号笔等。 6.2.2.1.2 保存液与冷冻液 5 DB 2201/T 20—2022 保存液：含有 20%犊牛血清(CS)的 PBS 液。 冷冻液：8%乙二醇（EG）＋0.1 mol/L 海藻糖（Tre.）＋m-PBS＋20%CS，用 0.22 µm 滤器过滤灭 菌分装。 6.2.2.1.3 胚胎装管 胚胎应在保存液微滴中清洗 4 次，后在冷冻液微滴中清洗 4 次。将胚胎吸入 0.25 mL 细管内， 用封口机封口、分类、标记，在 4 ℃的冰箱内放置平衡 10 min ～ 15 min 后放入冷冻仪。 6.2.2.1.4 胚胎冷冻保存 胚胎冷冻仪温度调至 -6 ℃ ～ -7 ℃，保持 2 min 后进行人工植冰，继续保持至 10 min，以 0.3 ℃ /min 的速率降温至 -35 ℃～ -38 ℃，保持 10 min 后，直接放入液氮罐中保存，并定期检查 和加液氮。 6.2.2.2 解冻 从液氮中取出装有胚胎的细管，空气浴 10 s 后 32 ℃～ 35 ℃ 水浴 10 s，用消毒纸擦干细管， 再用半干的酒精棉球擦拭细管表面，晾干，剪开细管封口端(如用细管塞封口的则拔出即可)，细管棉塞 端朝里装入移植枪供移植。应在解冻后10 min 内完成移植。 6.3 移植 6.3.1 器具 手术刀、手术缝合针和缝合线、腹腔内窥镜、宫颈钳、钝性9 # 针头、移胚针等。 6.3.2 药品 胚胎保存液（ Holding液） 、5%碘酊、黄体酮、青霉素